Proteus mirabilis- ONPG (ống thứ 8) âm tính

Serratia marcescens- ONPG (ống thứ 8) dương tính

Hình 3.4.         Ví dụ minh hoạ kết quả phản ứng OPNG-aza

3.8.   Khả năng thủy phân tinh bột

·        Môi trường: Bổ sung tinh bột tan (0,2%) vào môi trường nước thịt pepton, khử trùng ở 121 ⁰C trong 20 phút, đổ đĩa Petri.

·        Lấy vi khuẩn mới hoạt hoá cấy vạch hay cấy chấm lên đĩa thạch. Sau 2-5 ngày nhỏ thuốc thử Lugol (xem phần nhuộm Gram) lên vết cấy để quan sát khả năng phân giải tinh bột. Nếu thuốc thử Lugol không bắt màu quanh vết cấy tức là vi khuẩn có khả năng phân giải tinh bột.

Hình 3.5.         Phản ứng với dịch Lugol kiểm tra khả năng phân giải tinh bột của vi khuẩn.

3.9.   Khả năng tạo tinh thể Dextrin

·        Môi trường: hoà 50 g bột gạo vào 200 ml nước, quấy kỹ, thêm 20 g CaCO₃, sau đó bổ sung dần dần 750 ml nước sôi, đồng thời quấy đều rồi đun sôi 10 phút. Phân môi trường vào các ống nghiệm (15 ml/ống), khử trùng ở 121 ⁰C trong 30 phút.

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá (18-24 giờ) vào môi trường trên, đặt ở 30⁰C trong 5-10 ngày.

·        Bổ sung 1ml dung dịch tinh bột 3%, giữ ở 40 ⁰C trong 15 phút.

·        Lấy 3 giọt dịch trong phía trên hoà với 1 giọt dung dịch Lugol và dàn lên phiến kính, làm khô trong không khí và quan sát dưới kính hiển vi.

·        Nếu được sản sinh ra, những tinh thể dextrin hình lục giác bắt màu lam có thể quan sát được ở sát mép vết bôi.

3.10.           Khả năng phân giải celluloza

·        Môi trường khoáng:

NH₄NO₃                                     1 g

K₂HPO₄                                      0,5 g

KH₂PO_4­                                    0,5 g

MgSO₄. 7H₂O                             0,5 g

NaCl                                           1 g

CaCl₂                                          0,1 g

FeCl₃                                          0,02 g

Cao men                                    0,05 g

Nước cất                                    1000 ml

pH = 7,0- 7,2.

Phân môi trường vào ống nghiệm, khử trùng ở 121 ⁰C trong 20 phút.

·        Môi trường Pepton: 

Pepton                                        5 g

NaCl                                            5 g

Nước máy                                   1000 ml

pH = 7,0-7,2

Phân môi trường vào ống nghiệm, khử trùng ở 121 ⁰C trong 20 phút.

·        Cho vào ống nghiệm một băng giấy lọc dài 5-7 cm (với vi khuẩn hiếu khí để một phần băng giấy lọc nhô lên khỏi môi trường; với vi khuẩn kỵ khí thỉ để băng giấy lọc ngập trong môi trường).

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá, đặt ở nhiệt độ thích hợp, quan sát ảnh hưởng của vi khuẩn tới băng giấy lọc sau 1-4 tuần. Nếu vi khuẩn phát triển và làm nát giấy lọc tức là chúng có khả năng phân giải celluloza (phản ứng dương tính); âm tính là không làm biến đổi giấy lọc.

Cách khác:

·        Đổ vào đĩa Petri một lớp thạch 2% (15 ml thạch cho một đĩa Æ 9 cm).

·        Bổ sung bột celluloza (0,8%) và thạch (1,5%) vào môi trường ghi ở trên, đổ 5 ml lên trên lớp thạch 2% đã chuẩn bị trong đĩa Petri.

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá thành điểm trên môi trường, đặt ở nhiệt độ thích hợp trong 1-4 tuần và quan sát vòng phân giải celluloza được tạo ra quanh vết cấy.

 3.11. Khả năng thủy phân pectin

·        Môi trường:

Cao men                                      5 g

CaCl₂.2H₂O                                  0,5 g

Thạch                                           8 g

Na-polypectat                               10 g

Nước cất                                       1000 ml

NaOH 1N                                       9 ml

Dung dịch BTB 0,2%                      12,5 ml.

Để hoà tan Na-polypectat và các thành phần khác cần khuấy mạnh và làm nóng môi trường trong nồi cách thủy. Khử trùng ở 121 ⁰C không quá 5 phút rồi đổ đĩa Petri.

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá thành 8 chấm trên thạch đĩa, đặt ở nhiệt độ thích hợp 3 ngày rồi quan sát. Nếu quanh vết cấy có vệt lõm xuống là dương tính (Erwinia carotova); không có vệt lõm xuống là âm tính (Erwinia herbicola).

3.12.           Khả năng thủy phân Esculin

·        Môi trường:

Bổ sung Esculin (0,1%) và citrat sắt (0,05%) vào môi trường nước thịt pepton. Phân môi trường vào các ống nghiệm để làm thạch nghiêng. Khử trùng ở 121 ⁰C trong 20 phút.

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá (18-24 giờ), đặt ở nhiệt độ thích hợp sau 3,7 và 14 ngày rồi lấy ra để quan sát.

·        Kết quả: xuất hiện sắc tố màu đen nâu là phản ứng dương tính, không có là âm tính

3.13.           Khả năng tạo Dextran và Levan

·        Môi trường

Casein thủy phân                          15 g

Pepton                                          5 g

Đường kính                                    50 g

K₂HPO₄                                         4 g

Thạch                                            10 g

Nước cất                                        1000 ml

Dung dịch Xanh Trypan (Tripan blue) 1% trong nước                   7,5 ml

Dung dịch Tím kết tinh 1% trong nước                                       0,1 ml

pH 7,0

Khử trùng ở 115 ⁰C trong 20 phút. Để nguội đến 50 ⁰C, thêm 1ml dung dịch Kali-tellurit 1% (đã khử trùng bằng màng lọc) rồi đổ đĩa Petri.

·        Cấy ria để tạo khuẩn lạc đơn. Đặt ở 37 ⁰C trong 24 giờ, sau đó giữ thêm ở nhiệt độ phòng trong 24 giờ.

·        Vi khuẩn sinh dextran sẽ có khuẩn lạc nhỏ, màu lam tối, bề mặt nhầy và mọc lõm vào thạch (loài Streptococcus sanguis).

Vi khuẩn sinh levutan có khuẩn lạc nhầy màu phấn hồng (Streptococcus salivarius).

Nếu không sinh dextran và levan thì vi khuẩn có màu lam nhạt hoặc tối, kích thước nhỏ, dễ hóa sữa (Streptococcus mitis).

3.14.           Xác định 3-Ketolactoza

·        Môi trường:

Lactoza                                                 10 g

Cao men                                               1 g

Thạch                                                   20 g

Nước cất                                              1000 ml

pH = 7,0-7,2

Khử trùng ở 115 ⁰C trong 20-30 phút, đổ đĩa Petri.

·        Lấy vi khuẩn mới hoạt hoá (18-24 giờ) cấy điểm lên thạch đĩa, đặt ở nhiệt độ thích hợp trong 2 ngày để tạo khuẩn lạc rõ rệt.

·        Pha thuốc thử Benedict:

CuSO₄.5H₂O                                         17,3 g

Na₂CO₃ (khan)                                      100 g

Na-Citrat                                                173 g

Nước cất                                               thêm tới 1000 ml

Cách pha: hoà Na₂CO₃ và Na-Citrat trong 600 ml nước cất, lọc trong, sau đó thêm nước tới 850ml. Hoà tan CuSO₄ trong 100 ml nước, bổ sung nước cho tới 150 ml. Cuối cùng trộn dung dịch CuSO₄ vào dung dịch đầu, vừa đổ vừa khuấy.

·        Nhỏ thuốc thử Benedict lên khuẩn lạc trên mặt đĩa thạch, để từ 30 phút trở lên ở nhiệt độ phòng. 

·        Kết quả: nếu quanh khuẩn lạc xuất hiện những kết tủa màu nâu thì là phản ứng dương tính, nếu không thì là âm tính.

3.15.           Khả năng khử Nitrat

·        Môi trường:

Nước thịt pepton                                    1000 ml

KNO₃                                                    1 g

pH = 7,0-7,6

Phân môi trường vào các ống nghiệm (4-5 ml/ống), khử trùng ở 121 ⁰C trong 15-20 phút.

·        Chuẩn bị thuốc thử Griess:

Dung dịch A:   Acid sulfanilic                                       0,5 g

Acid acetic loãng (khoảng 10%)        150 ml.

Dung dịch B:    Alpha Naphtylamin                             0,1 g

Nước cất                                         20 ml

Acid acetic loãng (khoảng 10%)       150 ml.

·        Chuẩn bị thuốc thử Diphenylamin: 0,5 g Diphenylamin hòa vào 100 ml H₂SO₄ đặc, thêm 20ml nước cất.

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá vào môi trường (mỗi chủng cấy 2 ống), đặt ở nhiệt độ thích hợp trong 1,3,5 ngày. Chọn 2 ống không cấy vi khuẩn để làm đối chứng.

·        Lấy ống nghiệm sạch và bổ sung lần lượt các dung dịch như sau:

Dịch nuôi cấy vi khuẩn (hoặc môi trường ở ống đối chứng)

1 giọt dung dịch A

1 giọt dung dịch B

·        Kết quả:

- Nếu dịch nuôi cấy chuyển màu (đỏ, hồng, da cam hay nâu) là biểu thị có nitơrit, tức là vi khuẩn có khả năng khử Nitrat.

- Nếu dịch nuôi cấy không chuyển màu, thêm 1-2 giọt thuốc thử Diphenylamin để kiểm tra sự có mặt của Nitrat (chuyển màu xanh lam là có Nitrat chứng tỏ vi khuẩn không khử Nitrat; không chuyển màu tức là Nitrat đã được khử hết và nitơrit được khử tiếp tục thành các chất khác như N₂).

·        Chú ý: phản ứng khử Nitrat thực hiện trong điều kiện kỵ khí, vì vậy không được phân vào ống nghiệm quá ít môi trường.

Đối với các vi khuẩn khác nhau nitơrit có thể là sản phẩm cuối cùng của quá trình khử Nitrat, nhưng cũngcó thể chỉ là sản phẩm trung gian. Ngoài ra, tốc độ khử của các loài cũng khác nhau, vì thế cần theo dõi thường xuyên màu sắc của môi trường. Trong mọi trường hợp cần phải làm thêm phản ứng với chất chỉ thị diphenylamin.

3.16.           Khả năng khử Nitrit

·        Môi trường:

Peptone                                                 5 g

NaNO₂                                                  1 g

Nước cất                                               1000 ml

pH = 7,3-7,4

Phân môi trường vào các ống nghiệm, khử trùng ở 121 ⁰C trong 15 phút.

·        Chuẩn bị thuốc thử Griess: giống như phần khử Nitrat.

·        Cấy vi khuẩn, đặt ở 30 ⁰C trong 1,3,7 ngày rồi làm phản ứng xác định.

·        Nhỏ vào dịch nuôi cấy 1 giọt dung dịch A và 1 giọt dung dịch B (xem phần khử Nitrat), lắc nhẹ. Nếu mất màu đỏ và sinh ra NH₃ là kết quả dương tính (Alcaligenes odorans); nếu vẫn giữ màu đỏ là phản ứng âm tính, không khử nitơrit (Acinetobacter calcoaceticus).

3.17.              Khả năng phản nitrat hóa (Denitrification)

·        Môi trường:

Nước thịt pepton                                    100 ml

KNO₃                                                    1 g

pH = 7,2-7,4

Phân môi trường vào các ống nghiệm (4-5 ml), khử trùng ở 121 ⁰C trong 30 phút.

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá. Dùng vaselin bịt kín nút để ngăn ôxy, đặt ở nhiệt độ thích hợp trong 1-7 ngày và quan sát sự phát triển của vi khuẩn (tăng độ đục của dịch nuôi cấy, sinh khí NH₃). Vi khuẩn có phát triển là phản ứng dương tính, không phát triển là âm tính.

3.18.           Khả năng sinh amonia

·        Môi trường:

Pepton                                                  5 g

Nước cất                                               1000 ml

pH= 7,2

Phân môi trường vào các ống nghiệm, khử trùng ở 121 ⁰C trong 15-20 phút.

·        Chuẩn bị thuốc thử Nessler:

Hoà tan 20 g IK trong 50 ml nước; bổ sung I₂Hg cho đến khi bão hòa (khoảng 32g), sau đó thêm 460 ml nước. Cuối cùng bổ sung 134 g KOH. Bảo quản trong lọ tối ở nhiệt độ phòng.

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá (18-24 giờ), đặt ở nhiệt độ thích hợp trong 1,3,5 ngày.

·        Lấy vào ống nghiệm sạch một ít dịch nuôi cấy, nhỏ vài giọt thuốc thử Nessler. Nếu xuất hiện kết tủa màu vàng nâu là phản ứng dương tính.

3.19.         Xét nghiệm Ureaza

Mục đích: kiểm tra khả năng phân huỷ urê nhờ enzyme ureaza

·        Môi trường:

Pepton                                                  1 g

NaCl                                                     5 g

Glucoza                                                1 g

KH₂PO₄                                                2 g

Dung dịch Đỏ phenol 0,2% trong nước  6 ml

Thạch                                                   20 g

Nước cất                                               1000 ml

Khử trùng xong chỉnh pH đến 6,8-6,9, môi trường có màu vàng hơi ánh đỏ là được. Phân môi trường vào các ống nghiệm để làm thạch nghiêng. Khử trủng lại ở 115 ⁰C trong 30 phút.

·        Chuẩn bị dung dịch Urê 20%, khử trùng bằng màng lọc, bổ sung vào các ống nghiệm khi đã nguội đến 50-55 ⁰C (đạt nồng độ Urê 2%), đặt thạch nghiêng.

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá, đặt ở nhiệt độ thích hợp, sau 2-4 giờ lấy ra quan sát. Kết quả âm tính cần tiếp tục quan sát sau 4 ngày.

·        Kết quả: môi trường chuyển màu đỏ cánh đào là phản ứng dương tính, màu sắc không thay đổi là âm tính.

·        Chú ý: cần làm đối chứng âm tính (không bổ sung Urê), nhất là khi xác định các loài Pseudomonas, và đối chứng dương tính (so sánh với 1 chủng đã biết có hoạt tính ureaza).

Làm cách khác:

·        Cấy vi khuẩn vào môi trường thạch nghiêng nói trên và xác định hoạt tính ureaza sau 3 ngày và 7 ngày.

·        Lấy vi khuẩn từ thạch nghiêng làm dịch huyền phù đậm đặc trong ống nghiệm sạch.

·        Nhỏ 1 giọt Đỏ phenol vào dịch huyền phù, chỉnh pH đến 7 (Đỏ phenol chuyển từ vàng sang da cam).

·        Chia dịch huyền phù vào 2 ống nghiệm sạch. Trong ống 1 thêm vài tinh thể Urê (khoảng 0,05-0,1 g), ống thứ 2 giữ nguyên để làm đối chứng. Sau vài phút nếu dịch trong ống 1 (có Urê) chuyển sang kiềm (Đỏ phenol chuyển màu đỏ), biểu thị vi khuẩn có hoạt tính Ureaza; nếu không thì là âm tính.

3.20.         Xét nghiệm sinh Indol

·        Môi trường:

Dung dịch Pepton 1% trong nước

pH đến 7,2- 7,6.

Phân môi trường vào các ống nghiệm (1/3-1/4 thể tích ống), khử trùng ở 115 ⁰C trong 30 phút.

·        Chuẩn bị thuốc thử:

Para-dimethyl-amino-benzaldehyde                  8g

Etanol 95%                                                     760 ml

HCl đặc                                                          160 ml

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá (18-24 giờ), đặt ở nhiệt độ thích hợp và làm phép thử tại các thời điểm 1, 2, 4, 7 ngày.

·        Nhỏ thuốc thử theo mép ống nghiệm (tạo thành lớp dày 3-5 mm). Giữa hai lớp thuốc thử và dịch nuôi cấy nếu có màu đỏ là phản ứng dương tính. Nếu màu sắc không rõ rệt thì thêm 4-5 giọt eter vào dịch nuôi cấy, lắc nhẹ làm cho eter khuếch tán vào lớp dịch, để yên một lát khi eter nổi lên bề mặt thì lại thêm thuốc thử nói trên. Nếu trong môi trường có indol thì sẽ xuất hiện màu đỏ trong lớp eter.

Hình 3.5.         Thuốc thử chuyển màu đỏ khi trong dịch nuôi cấy có indol.

3.21.         Xét nghiệm Phenylalanin desaminaza

(kiểm tra khả năng chuyển hoá nhóm amin (-NH₂) trong  acid amin)

·        Môi trường:

Cao men                                                       3 g

Na₂HPO₄                                                       1 g

DL-Phenylalanin (hoặc L-Phenylalanin)            1 g

NaCl                                                              5 g

Thạch                                                           12 g

Nước cất                                                       1000 ml

pH = 7,0

Phân môi trường vào các ống nghiệm, khử trùng ở 121 ⁰C trong 10 phút, đặt thạch nghiêng.

·        Thuốc thử:     dung dịch FeCl₃ 10% (W/V)

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá, đặt ở 37 ⁰C, làm phép thử sau 4 giờ hoặc 8-24 giờ.

·        Nhỏ 4-5 giọt thuốc thử lên bề mặt thạch nghiêng có vi khuẩn phát triển, nếu xuất hiện màu lục là phản ứng dương tính (do sản sinh ra acid Phenylpyruvic), nếu không đổi màu thì là phản ứng âm tính.

Hình 3.6. Thí nghiệm kiểm tra phenylalanin desaminaza.

3.22.           Tryptophan desaminaza

Có hai cách kiểm tra:

Cách thứ nhất:

xác định đồng thời Tryptophan desaminaza, Ureaza và khả năng sinh Indol.

·        Môi trường:

L-Tryptophan                     3 g

KH₂PO₄                             1 g

K₂HPO₄                              1 g

NaCl                                   5 g

Etanol 95%                         10 ml

Nước cất                             900 ml.

Thêm Đỏ phenol (khoảng 25- 30mg)

pH = 6,8-6,9

Phân môi trường vào các bình tam giác, khử trùng ở 121 ⁰C trong 20 phút.

·        Hoà 20 g Urê vào 100ml nước, khử trùng bằng màng lọc, bổ sung vào môi trường đã chuẩn bị ở trên (thao tác vô trùng). Phân môi trường vào các ống nghiệm vô khuẩn (3-4 ml).

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá (18-24 giờ), nuôi ở nhiệt độ thích hợp trong 24 giờ.

·        Lấy ra 2-4 giọt dịch nuôi cấy, thêm 1 giọt dung dịch FeCl₃ (khoảng 33%). Nếu hiện màu nâu đỏ là phản ứng Tryptophan desaminaza dương tính, không hiện màu là phản ứng âm tính. Dùng vi khuẩn Proteus làm đối chứng dương tính.

·        Nếu môi trường sau khi nuôi cấy vi khuẩn chuyển từ màu vàng sang đỏ là biểu hiện có hoạt tính Ureaza. Dùng thuốc thử para-dimethylaminobenzaldehyd để kiểm tra sự hình thành indol. Nếu không định kiểm tra ureaza thì không cần bổ sung Đỏ phenol và Urê vào môi trường.

Cách 2 thứ hai:

·        Chuẩn bị hoá chất:

L-Tryptophan 0,2-0,5%

Nước muối sinh lý hoặc dung dịch đệm phosphat pH 6,8

Dịch A: 50 ml KH₂PO₄ 0,2 M (27,2g/L)

Dịch B: 23,6 ml Na₂CO₃ 0,2 M (8g/L)

Trộn dịch A và B với nhau

FeCl₃     33%

·        Cấy vi khuẩn vào môi trường thạch nghiêng nước thịt pepton, đặt ở nhiệt độ thích hợp trong 24 giờ.

·        Lấy 4 ống nghiệm sạch, thêm vào mổi ống 4 giọt dung dịch L- Tryptophan 0,2-0,5% và 4 giọt nước muối sinh lý (hay dung dịch đệm phosphat pH 6,8).

·        Lấy vi khuẩn từ thạch nghiêng làm thành dịch huyền phù đậm đặc trong 2 ống, để lại 2 ống làm đối chứng, giữ ở nhiệt độ phòng trong 15-20 phút.

·        Thêm vào mỗi ống 1 giọt dung dịch FeCl₃ (33%). Nếu hiện màu nâu đỏ là phản ứng dương tính, không đổi màu là âm tính. Có thể dùng vi khuẩn Proteus làm đối chứng dương tính.

3.23.           Carboxylaza đối với Ornithin, Lysin, và Arginin

·        Môi trường:

Pepton                                                        5 g

Cao thịt                                                       5 g

D-Glucoza                                                   0,5 g

Bromocresol purple (BCP) 1,6%                   0,625 ml

Đỏ Cresol 0,2%                                           2,5 ml

Thạch                                                          3-6 g

Nước cất                                                     1000 ml

Hòa tan các thành phần trên trong nồi cách thủy, chỉnh đến pH 6, thêm chỉ thị màu.

·        Chia môi trường thành 4 phần đều nhau, bổ sung từng chất L-Ornithin, L-Lysin, L-Arginin với nồng độ 1% (nếu dùng DL-acid amin thì lấy nồng độ 2%), sau đó chỉnh pH đến 6,0-6,3. Một phần không thêm acid amin dùng làm đối chứng. Phân vào các ống nghiệm nhỏ (mỗi ống 3-4 ml), khử trùng ở 121 ⁰C trong 10 phút. Môi trường chứa Ornithin có thể tạo một ít kết tủa nhưng không ảnh hưởng đến kết quả thí nghiệm.

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá (18-24 giờ), sau đó đổ vaselin bịt kín nút, nuôi ở điều kiện thích hợp. Vi khuẩn đường ruột thuộc họ Enterobacterobacteriaceae cần nuôi ở 37 ⁰C trong 4 ngày và theo dõi kết quả hàng ngày. Các vi khuẩn phi lâm sàng nuôi ở 30 ⁰C, quan sát trong 7 ngày. Nếu chỉ thị màu chuyển sang màu tía hay màu tía có ánh đỏ là dương tính, nếu màu vàng (như ống đối chứng) là âm tính. Vi khuẩn đường ruột thường biểu hiện phản ứng dương tính sau 1-2 ngày, nhưng cũng có khi chậm hơn, cần theo dõi qua 3-4 ngày.

3.24.           Arginin dihydrolaza

·        Môi trường Thornley:

Pepton                                                           1 g

NaCl                                                              5 g

K₂HPO_4­                                                        0,3 g

Thạch                                                            6 g

Đỏ Phenol                                                     0,01 g

L-Arginat                                                       10 g

Nước cất                                                       1000 ml

pH = 7,0-7,2.

Phân môi trường vào các ống nghiệm (4-5 ml), khử trùng ở 121 ⁰C trong 15 phút. Chú ý làm ống đối chứng không có Arginat.

·        Cấy vi khuẩn mới hoạt hoá, dùng vaselin bịt kín nút ống nghiệm, nuôi ở nhiệt độ thích hợp trong 3, 7, 14 ngày để quan sát. Môi trường chuyển sang màu đỏ là dương tính, không chuyển màu là âm tính.

3.25.           Acetylamin

·        Dung dịch Acetylamin:

Acetylamin                                                             2 g

Nước cất                                                                20 ml

(không cần khử trùng)

·        Dung dịch đệm:

K₂HPO₄                                                                  0,4 g

KH₂PO₄                                                                  0,1 g

KCl                                                                         8 g

Nước cất                                                                1000 ml

Khử trùng ở 115 ⁰C trong 20 phút.

·        Dung dịch làm thí nghiệm: Pha loãng dung dịch Acetylamin trong dung dịch đệm theo tỷ lệ 1:99 vol/vol.

·        Thuốc thử Nessler:

KI                                                       5 g

       Nước cất                                             5 ml

Thêm dịch HgCl₂ bão hoà, để lạnh cho đến khi lắc mạnh mà vẫn còn một ít kết tủa thì dừng. Thêm 40ml NaOH 9N rồi bổ sung nước đến 100 ml.